细胞培养过程中,由于实验环境、操作者鼻腔口腔、实验器材等很多地方都有支原体的存在。因此,细胞发生支原体污染的频率很高。
同时,由于支原体直径很小,仅在180nm~350nm之间,只有通过电镜才能看到。因此,支原体污染不易被实验者肉眼发觉。
而支原体污染是个循序的过程,普通抗生素对其无效。因此,被支原体污染的细胞会持续受到影响,导致实验数据不准确。
本期文章中,我们介绍一下细胞被支原体污染后,*清除支原体的方法。
细胞被支原体污染,解决方案
方法一:确认细胞已被支原体污染,终止试验,丢弃所有被污染的细胞和耗材。
重新复苏细胞,注意选用未被污染的细胞株、血清和培养基,并规范操作。
方法二:对于珍贵的,样品不可再得的细胞,或价格昂贵的种子细胞,不但无法丢弃,而且作为种子细胞,还需要**支原体污染。
此时,需选用特异性的支原体杀除剂,清除污染,保护细胞。
目前世界上you效的方法是是德国的一款专li生物试剂,由Minerva公司生产,品名Mynox®。
此试剂可在2-3小时内将支原体主动杀除。特别适合细胞保种。
Mynox®为枯草杆菌中提取出的生物制剂,加入培养液中,可特异性地与支原体膜结合,改变膜通透性。通过此生物物理的方法,2~3小时内,即可把细胞中的支原体杀除掉。因为细胞膜结构与支原体膜不同,故Mynox®不会与细胞膜结合,因此无细胞毒性。
注意:3小时后,需将此试剂洗脱,将细胞更换到新的培养耗材和培养液中,重新培养。
此时,不应使用PCR方法检测细胞中支原体。由于支原体解体,故PCR结果为假性强阳性。
Mynox®杀除支原体功能强大有效,但价格较贵。
方法三:对于已耗费很多时间,大量扩增起来的细胞,或经过基因转染、体外刺激等大量工作处理过的细胞,如果发现细胞被支原体污染了,怎么办?此时由于前期工作量巨大,使操作人员无法丢弃已有细胞。
但由于价格原因,又无法使用方法二提到的昂贵试剂杀除细胞上的支原体,
同时,实验人员还需要清除细胞上的支原体污染,让实验得以往下推进,以终获得准确的实验数据。
此时,实验者可选用对支原体*的抑制剂,通过对细胞的前期处理,中期加药,逐步通过4代左右的培养,得以将支原体污染*清除,确保试验顺利推进,结果准确。
*此类试剂众多,笔者周围的实验人做过很多尝试,其中效果确切且性价比较高的当属德国Minerva公司的ZellShield®祛除剂。
它的原理是:通过抑制支原体增殖中DNA和蛋白的合成,达到抑制新的支原体增殖的目的。属复合型的新型抗生素。
注:使用ZellShield®时,不需使用链青霉素。
操作步骤:
第yi步:研究发现,98%的支原体污染发生在细胞间隙。因此,首先要把细胞消化下来,放入离心管,悬浮冲洗,离心,弃上清,反复三次。此时可将细胞上大部分的支原体去除,为进一步加药抑制做好准备。
第二步:培养液中加入1%的ZellShield®,细胞进行正常培养。新的支原体增殖受到抑制,旧的支原体随着细胞的换液逐步减少,通过4代左右的培养,细胞中的支原体基本可被*清除。
此试剂价格约2800元/50ml,1%浓度使用,可保证大量细胞的实验得以顺利推进。性价比较高,但祛除过程时间稍长。
有些细胞保种中心,当珍贵细胞被支原体污染后,会将Mynox®和ZellShield®结合使用,效果确切,结果令人满意。
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