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耐甲氧西林金葡菌显色培养基
HiCrome MeReSa HiVeg Agar Base
货号 | 品名 | 规格 | 价格 |
MV1674 | 耐甲氧西林金葡菌显色培养基 HiCrome MeReSa HiVeg Agar Base（需如下添加剂） | 100g 500g | 询价 |
FD229 | MeReSa Selective Supplement（甲氧西林） | 5管 | 询价 |
FD259 | Cefoxitin supplement | 5管 | 询价 |
原理
金黄色葡萄球菌是侵袭性致病菌，能导致人体几乎任何组织或器官的疾病，特别是对于免疫力不高的人群（1）。葡萄球菌的早期感染采用青霉素治疗。但随着时间的发展，一些耐药的金葡菌出现。甲氧西林是下一代可采用的抗生素。尽管甲氧西林对治疗大部分葡萄球菌感染有效，但仍有一些葡萄球菌菌株发展出对甲氧西林的耐药性，因而被称为耐甲氧西林的金黄色葡萄球菌，简称MRSA（2）。那些有皮肤伤口破损、留置导管和烧伤患者，具有容易发展为MRSA感染的风险（3）。在和MRSA感染者接触后保持个人卫生，可极大地阻断MRSA感染的传播（2）。
培养基中的HiVeg水解物、酵母粉和HiVeg提取物提供必要的氮源、碳源和维生素B族营养。MRSA特异性裂解培养基中的显色混合剂，呈蓝绿色菌落。丙酮酸钠促进葡萄球菌生长。氯化钠维持培养基渗透压平衡。高浓度的氯化钠同时抑制伴随的其他菌群。选择性添加剂（甲氧西林和头孢西丁）抑制对甲氧西林敏感的金葡菌和其他伴随菌群。
该产品用HiVeg植物蛋白成份替代了动物蛋白成份，培养功效*一致，且
（1）批间差异更小
（2）增菌时由于动物蛋白造成的干扰因素更少
（3）避免疯牛病（BSE / TSE）、口蹄疫等相关动物病毒的风险
（4）对实验人员及实验环境更安全
此产品*无动物源成份
用途
分离和选择性鉴定耐甲氧西林的金黄色葡萄球菌（MRSA）
培养基组成
成分 | g/L |
HiVeg的水解物 | 3.000 |
酵母粉 | 2.500 |
HiVeg提取物 | 2.500 |
氯化钠 | 40.000 |
丙酮酸钠 | 5.000 |
显色混合剂 | 5.300 |
琼脂 | 15.000 |
终pH（25°C）7.0±0.2 | |
配制
41.65 g重悬于 500 ml蒸馏水。加热至沸腾使*溶解。高压灭菌15磅(121°C) 15分钟。冷却至45-50°C. 无菌加入1管复溶的甲氧西林（货号FD229)和1管复溶的头孢西丁(货号FD259)以增加选择性。混匀并倾注平板。
培养反应
加入添加剂后培养35-37°C 18-48小时，结果如下：
菌株（ATCC） | 未加添加剂时的生长 | 接种量（CFU） | 回收率 | 菌落颜色 | 加入添加剂后的生长 | 回收率 |
表皮葡萄球菌（ATCC 12228） | 抑制 | ≥103 | 0% |
| 抑制 | 0% |
金黄色葡萄球菌（ATCC 6538） | 旺盛 | 50-100 | ≥50% | 蓝绿色 | 抑制 | 0% |
金黄色葡萄球菌MRSA（ATCC 43300） | 旺盛 | 50-100 | ≥50% | 蓝绿色 | 旺盛 | ≥50% |
金黄色葡萄球菌ATCC 25923 | 旺盛 | 50-100 | ≥50% | 蓝绿色 | 抑制 | 0% |
大肠杆菌ATCC 25922 | 贫瘠-好 | 50-100 | 30-40% | 紫色 | 抑制 | 0% |
粪肠球菌ATCC 29212 | 不长-贫瘠 | 50-100 | ≤10% | 浅绿色 | 抑制 | 0% |
木糖葡萄球菌ATCC 29971 | 旺盛 | 50-100 | ≥50% | 金属蓝 | 抑制 | 0% |
参考文献
1.DWorkin M et. al 2006. The Prokaryotes (a Handbook on the Biology of Bacteria) 3rd ed, Vol. 2, page 345.
2.Methicillin Resistant Staphylococcus aureus Copyright ã 1997-2005 Canadian Centre for Occupational Health and Safety, Sept 19th, 2005.
3.Dr. Alan Johnson, methicillin resistant staphylococcus aureus (MRSA) infection. The Support group for MSRA sufferers and Dependents, Aug 1st , 2005
产品引用文献
1. Al‐Zaidi, J.R. and A.A. Al‐Sulami, Comparison of chromogenic agar medium and diffusion disk test for detection of hospitalacquired methicillin resistant Staphylococcus aureus (HA‐MRSA) from patients and hospital environment in Nasiriyah city,Iraq. African Journal of Microbiology Research, 2013. 7(19): p. 1888‐1895.
2. Dubey, D., et al., Surveillance of infection status of drug resistant Staphylococcus aureus in an Indian teaching hospital.Asian Pacific Journal of Tropical Disease, 2013. 3(2): p. 133‐142.
3. Dubey, D., et al., A report on infection dynamics of inducible clindamycin resistance of Staphylococcus aureusisolated from a teaching hospital in India. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 2013. 3(2): p. 148‐153.
4. Oberoi, L., R. Kaur, and A. Aggarwal, PREVALENCE AND ANTIMICROBIAL SUSCEPTIBILITY PATTERN OFMETHICILLIN‐RESISTANT STAPHYLOCOCCUS AUREUS (MRSA) IN A RURAL TERTIARY CARE HOSPITAL IN NORTH INDIA. SURGERY.21.
5. Sharma, S. and A. Mall, The prevalence, antibiogram and characterisation of methicillin resistant Staphylococcus aureusamong the patients from the Doon Valley hospitals. African Journal of Microbiology Research, 2011. 5(21): p. 3446‐3451.
6. Singh, V., et al., STAPHYLOCOCCUS AUREUS CAUSING WOUND INFECTION.
7.Jawad R. Al-Zaidi. Methicillin Resistant Staphylococcus Aureus (MRSA) Nasal Carriage among Health Care Workers in Intensive Care Units. Medical Journal of Babylon[J]. 2014,11 (3): 749-757 .
8.Poongodi Lakshmi Santhanakumarasamy, Susitha Thankian. Comparison of phenotypic and molecular methods in the detection of methicillin resistant Staphylococcus and its implications. Journal of the Scientific Society[J]. 2015,(42): 166-169.
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